荧光定量PCR(qPCR)是一种通过实时监测PCR扩增过程中荧光信号变化,实现核酸定量分析的分子生物学技术。其核心原理、荧光标记体系及Ct值解读,构成了该技术的三大支柱。
一、核心原理:实时监测与定量分析
qPCR在传统PCR基础上引入荧光标记系统,通过实时监测每个循环的荧光信号强度,实现扩增产物的动态跟踪。当荧光信号达到预设阈值时,所经历的循环数即为Ct值(CycleThreshold)。由于Ct值与起始模板量呈负相关(模板量越多,Ct值越小),结合标准曲线可实现绝对定量或相对定量分析。例如,在疾病诊断中,通过检测病原体核酸的Ct值,可判断感染程度;在基因表达研究中,比较不同样本的Ct值差异,可分析基因表达水平。
二、荧光标记体系:染料法与探针法
染料法(SYBRGreenI)
SYBRGreenI是一种嵌入型荧光染料,可非特异性结合双链DNA(dsDNA)。在游离状态下,染料荧光微弱;与dsDNA结合后,荧光强度增强1000倍。该方法操作简便、成本低,但无法区分特异性产物与非特异性扩增(如引物二聚体),需通过熔解曲线分析验证产物特异性。
探针法(TaqMan探针)
TaqMan探针为寡核苷酸链,5’端标记荧光报告基团,3’端标记淬灭基团。探针完整时,报告基团荧光被淬灭;PCR扩增时,Taq酶的5’→3’外切酶活性切割探针,释放报告基团,荧光信号与产物量同步累积。该方法特异性强(需引物与探针双重匹配)、灵敏度高(可检测单拷贝基因),且支持多重检测(通过不同荧光标记区分多个靶基因)。
三、Ct值:定量分析的核心参数
Ct值是qPCR结果解读的关键指标,其大小直接反映起始模板量。例如,在肿瘤标志物检测中,若患者样本中某基因的Ct值显著低于健康人群,可能提示基因过表达,与肿瘤发生相关。此外,Ct值还可用于评估实验效率:标准曲线斜率接近-3.32时,扩增效率达100%;若斜率偏离,需优化反应条件(如引物浓度、退火温度)。
四、应用场景与优势
qPCR广泛应用于疾病诊断(如新冠病毒检测)、基因表达分析、转基因检测及SNP分型等领域。其核心优势包括:
高灵敏度:可检测单拷贝基因;
高特异性:探针法通过双重匹配确保结果准确;
实时定量:无需电泳等后处理步骤,避免交叉污染;
宽动态范围:可覆盖5-6个数量级的模板浓度。
从原理到应用,qPCR以荧光信号为“量尺”,为生命科学研究与临床诊断提供了精准、高效的核酸定量工具。